W ostatnich latach na głównych obszarach uprawy ziemniaka rozprzestrzeniła się antraknoza (czarna plama, czarna kropka, czarna kropka) wywoływana przez grzyb Colletotrichum coccodes. Producenci i badacze od dawna uważali ją za drobną chorobę, która nie ma większego znaczenia. Jednak wzrost szkodliwości na tle zwiększonych wymagań dotyczących jakości bulw zarówno w postaci świeżej, jak iw przemyśle przetwórczym przeniósł antraknozę do kategorii choroby ważnej gospodarczo, powodującej znaczne straty ekonomiczne. Według publikacji naukowych (Kuzniecowa M.A. i in., 2020) antraknoza na ziemniakach nie była rozpowszechniona w Rosji aż do około połowy lat pięćdziesiątych. Potem nastąpił stopniowy wzrost zachorowań. W latach 1950-1980 porażenie roślin ziemniaka przez antraknozę wynosiło od 1985 do 5%, w latach 25-1986 od 1987 do 10%, w upalne i suche lato 35 r. 1988 - od 10 do 70%, w latach 1989-5 - od 40 do 1990%, w latach 2000-3 - od 35 do 2001%, w upalne i suche lato 2009 r. od 2 do 55%, w latach 2010-5 - od 100 do 2011%. Badacze są zgodni co do tego, że głównymi przyczynami wzrostu dotkliwości antraknozy są import porażonego materiału siewnego, rozsiewanego z nasionami, uszkodzenia bulw podczas uprawy zmechanizowanej oraz spadek odporności roślin na tle niekorzystnych warunków uprawy. Antraknoza może bezpośrednio obniżyć plon ziemniaków o 2019-3%, pogorszyć jakość produktu z powodu zewnętrznych plam na skórce, przebarwień tkanek wewnętrznych oraz doprowadzić do obniżenia przydatności handlowej plonu w okresie przechowywania.
Objawy antraknozy. Grzyb Colletotrichum coccodes może pojawiać się na bulwach, rozłogach, korzeniach, łodygach i liściach ziemniaków. Na nadziemnych częściach roślin pierwsze objawy antraknozy objawiają się żółknięciem i zasychaniem liści. Jednocześnie łodygi pozostają zielone przez długi czas (zdjęcie 1). Tylko przez żółknięcie liści antraknoza nie jest określana. Zasychanie liści ziemniaka może być powodowane nie tylko przez antraknozę, sklerotynię, pektobakterie, ale także przez cercosporosis, alternariozę i verticillium (więdnięcie). W wyniku łącznego manifestowania się nowych rodzajów infekcji coraz częściej obserwuje się w produkcji nietypowo wczesne suszenie roślin ziemniaka.
W drugiej połowie sezonu wegetacyjnego choroba atakuje łodygi. Najpierw pojawiają się małe brązowe plamy w obszarze mocowania suszonych liści (zdjęcie 2). Następnie dotknięty obszar rozszerza się (zdjęcie 3). W przyszłości plamy rosną, pojawia się na nich biała powłoka grzybni. Tkanka łodygi pod grzybnią zmienia kolor z brązowego na czarny (fot. 4,5). Biała płytka na łodygach jest również spowodowana rizoktoniozą, sklerotinią i szarą zgnilizną.
Zdjęcie 2,3. Rozwój antraknozy na łodygach
Zdjęcie 4,5. Biały kwiat grzybni antraknozy na łodygach
Plamy antraknozowe wpływają również na podziemną strefę łodyg. W kolorze są podobne do manifestacji ryzoktoniozy (zdjęcie 6). Jednak w rizoktoniozie, w przeciwieństwie do antraknozy, granica między tkanką zaatakowaną a zdrową jest bardzo wyraźna.
Wraz z dalszym rozwojem antraknozy na podziemnej części rośliny w miejscu uszkodzenia łodyg, rozłogów, korzeni powierzchnia gnije, złuszcza się i łatwo się oddziela (fot. 7). Przy dużej wilgotności uszkodzenia przybierają jasnofioletowy odcień.
Uszkodzone pędy można łatwo wyciągnąć z ziemi. W miejscu porażenia łodyg tworzy się wiele czarnych mikrosklerocjów (fot. 8). Stąd angielska nazwa choroby - czarna kropka (czarna kropka). Ale to również nie jest wyjątkowy objaw; sklerocja również tworzy verticillium i białą zgniliznę.
Objawy antraknozy na bulwach są bardzo zróżnicowane. Początkowo są to szare, nieuporządkowane plamy na skórce. Podczas przechowywania pojawia się srebrzysty odcień (fot. 9). W przeciwieństwie do parcha srebrzystego plamy antraknozy są mniej wyraźnie oddzielone od zdrowej skórki, a na plamach widoczne są mikrosklerocja (fot. 10). Typowa czarna plama ze srebrzystobrązowymi plamami pojawia się na powierzchni bulwy z nasyceniem całej chorej tkanki małych czarnych mikrosklerocjów. Silnie porażone bulwy wysychają, skórka łatwo zdziera się z powierzchni, na której również tworzą się małe sklerocje. Powierzchnia bulw jest nierówna, nierówna. Na rozcięciu porażonych bulw można prześledzić brązową tkankę do głębokości 0.5-0.8 cm, z czasem pojawiają się twarde zagłębienia. Przy przedłużonej inkubacji w warunkach przechowywania objawy choroby rozprzestrzeniają się po całej bulwie, pojawia się płacząca tkanka, śluz i całkowite zniszczenie takich bulw.
Fot. 9. Objawy i sklerocja antraknozy na bulwach
Przy silnym rozwoju antraknozy obserwuje się przygnębione plamy, pęknięcia skórki, ciemne uszkodzenia pierścienia naczyniowego i miąższu bulw, które różnią się nieco od innych chorób bulw (phytophthora, fomosis, fusarium, ditylenchosis), ale nie jednoznacznie. Objawy wizualne i na tym etapie nie wystarczą do identyfikacji patogenu (fot. 11).
Źródła infekcji i czynniki rozwoju antraknozy. Zakażenie ziemniaków C. coccodes może być spowodowane przez glebę, bulwy i przenoszone drogą powietrzną inokulum. Inokulum glebowe ma z reguły większą szkodliwość w porównaniu z bulwami. W glebie grzyb może istnieć jako sklerocja lub konidia na niewykrywalnych poziomach. Wcześniej uważano, że sklerocja przeżywa w glebie ponad 4 lata, obecnie mówi się o wydłużeniu tego okresu do 8-15 lat. Patogen zimuje w postaci sklerocji na powierzchni porażonych bulw, na szczątkach roślin iw glebie. Wiosną zarodniki tworzą się na szczątkach roślin, bulwach i rozprzestrzeniają się wraz z kroplami wilgoci w glebie i na roślinie. Latem zarodniki kiełkują w kroplowej wilgoci i są w stanie zainfekować wszystkie części rośliny. Ponowna infekcja roślin następuje wiele razy w ciągu sezonu, zarodniki przenoszone są przez wiatr, owady, krople deszczu. C. coccodes często infekuje łodygi ziemniaka i inne tkanki na początku sezonu wegetacyjnego, ale objawy chlorozy i martwicy liści, jak również oznaki stwardnienia patogenu, często pojawiają się dopiero stosunkowo późno w okresie wegetacji.
Porażone bulwy nasienne są zwykle początkowym źródłem zakażenia gleby i ważnym źródłem zakażenia korzeni, rozłogów i bulw potomnych. Każda część powierzchni bulwy może zostać zainfekowana przez C. coccodes, co może prowadzić do późniejszej infekcji łodygi. Nie jest możliwe wykrycie całej porażenia w partii, ponieważ grzyb może zajmować niewielką część powierzchni lub znajdować się wewnątrz bulwy. Nasiona bez widocznych śladów C. coccodes mogą być porażone. Grzyb z materiału siewnego stopniowo zasiedla glebę, oddalając się od zainfekowanej bulwy z szybkością 1 mm dziennie. Infekcja nasion matki ma trwały wpływ na infekcję potomstwa, a infekcja nasion matki rozpoczyna się wkrótce po posadzeniu. Bulwy nasienne z porażeniem zewnętrznym wytwarzają bulwy potomne o największej częstotliwości i nasileniu porażenia, a także porażenie łodygi i liczba bulw porażonych na końcu rozłogu. Podobne nasilenie choroby rozwija się na bulwach i łodygach roślin wyrosłych ze zdrowych bulw, ale w pobliżu bulw nasiennych z infekcją wewnętrzną lub zewnętrzną. Grzybnia antraknozy przemieszcza się w glebie z zainfekowanych bulw nasiennych do bulw potomnych sąsiednich roślin. Nie ma korelacji między porażeniem powierzchni bulw a zakażeniem wewnętrznym. Jednak wszystkie bulwy z infekcją wewnętrzną miały również infekcję zewnętrzną. Infekcja naczyniowa C. coccodes w bulwach nasiennych jest przedmiotem szczególnego zainteresowania, ponieważ jest mało prawdopodobne, aby infekcja naczyniowa była kontrolowana przez traktowanie zainfekowanych bulw środkami grzybobójczymi stosowanymi na powierzchnię bulw.
Jaka jest przyczyna porażki - zakażony materiał siewny, skażona gleba, przenoszenie drogą powietrzną? Można to stwierdzić na podstawie niektórych cech zmiany. Zmiana przenoszona drogą powietrzną ma wygląd podobny do alternariozy, ale w obrębie zmiany nie tworzą się koncentryczne pierścienie. W regionach narażonych na burze piaskowe istnieje wysokie ryzyko inwazji liści w ten sposób, ponieważ rany piaskowe zapewniają drogę do przedostania się grzyba. Wysoka częstość porażenia bulw na końcu rozłogu wskazuje, że pierwotne porażenie bulw potomnych nastąpiło na skutek przenikania patogenu przez rozłogi, tj. z bulwy macierzystej. W jednym z badań pole zostało obsadzone pozornie czystymi nasionami w nowej glebie, ale stwierdzono, że od 15 do 88% bulw potomnych zostało zarażonych.
Jeśli głównym źródłem jest gleba, rozwój mikrosklerocji na bulwach następuje losowo na całej powierzchni bulw. Objawy czarnej plamistości pojawiają się z dużą częstotliwością w tkance korzeniowej (60 do 90%) w dniu pierwszej oceny 5 tygodni po posadzeniu, niezależnie od poziomu inokulum (niski lub wysoki), ale na łodygach znajdujących się pod ziemią choroba jest w tej chwili widoczny niewiele lub wcale. Podobne badanie na inokulum przenoszonym przez bulwy wykazało, że objawy na korzeniach i rozłogach można wykryć mniej więcej w czasie wschodów, podczas gdy objawy na łodygach pojawiają się około 7-10 tygodni po zaszczepieniu. Badania przeprowadzone w komercyjnych warunkach uprawy w stanie Waszyngton (USA) wykazały, że C. coccodes pojawia się już po 15 dniach od wzejścia na pędach nadziemnych, a później, 22 dni po wzejściu na pędach podziemnych; jednak więcej infekcji było zwykle izolowanych z podziemnych łodyg w kolejnych terminach pobierania próbek.
W warunkach polowych w Szkocji kolonizacja przez C. coccodes tkanki korzeniowej uzyskanej z mikrorozmnażanych roślin wolnych od choroby była podobna jak w korzeniach uzyskanych zarówno z wizualnie czystych, jak i wadliwych nasion bulw ocenianych na początku sezonu wegetacyjnego, ale była istotnie niższa w późniejszych terminach pobierania próbek. W badaniach w Idaho kolonizacja tkanki macierzystej przez C. coccodes nad i pod ziemią była wyższa niż częstość kolonizacji rozłogów i korzeni. Tendencja ta utrzymywała się niezależnie od tego, czy infekcja była spowodowana zanieczyszczeniem gleby, bulw nasiennych, czy inokulacją dolistną. Kontrastuje to z wcześniejszymi badaniami, które wykazały, że objawy czarnej plamistości można znaleźć najpierw w tkance korzeniowej w porównaniu z innymi ocenianymi tkankami roślinnymi. W różnych badaniach oceniano różne wskaźniki: nasilenie objawów lub kolonizację tkanek przez grzyby, co jest najbardziej prawdopodobną przyczyną rozbieżności. Powszechnie przyjmuje się, że infekcje C. coccodes pozostają utajone przez dłuższy czas w łodygach w porównaniu z korzeniami i rozłogami.
Badania porównujące wpływ gleby i nasion wykazały, że infekcja gleby powoduje więcej czarnych plam niż infekcja przenoszona przez nasiona. Na polu w Anglii różne poziomy inokulum bulw nasiennych skutkowały wzrostem porażenia nasady łodyg i korzeni antraknozą, ale nieproporcjonalnym do stopnia porażenia bulw nasiennych, podczas gdy poziom porażenia gleby funkcjonalnie determinuje poziom porażenia antraknozą. Zwiększenie ilości inokulum glebowego zwiększa nasilenie choroby, w tym martwicy i chlorozy liści, a także rozwój stwardnień na korzeniach i łodygach.
Wiedza o tym, w jaki sposób pola są zanieczyszczone inokulum czarnej kropki, pomaga w podejmowaniu decyzji dotyczących wyboru miejsca, zastosowania uprawy grzybobójczej lub wyboru odmiany do uprawy na danym polu. W przypadku antraknozy opracowano dokładną metodologię badań opartą na analizie DNA PCR i ustalono związek między poziomem inokulum w glebie a ryzykiem wystąpienia choroby ziemniaka. Procedura pobierania próbek gleby do badania antraknozy jest podobna do badania nicieni. Docelowy DNA antraknozy oznacza się ilościowo metodą PCR i wyraża jako pg DNA/g gleby (pg to pikogram lub bilionowa część grama). Wyniki badań gleby klasyfikują ryzyko jako niskie (0-100 pg DNA/g gleby), średnie (101-1000 pg DNA/g gleby) i wysokie (>1000 pg DNA/g gleby) w oparciu o wpływ zanieczyszczenia gleby na ziemniaki . Jeśli próg jest niski, istnieje niewielkie ryzyko chorobotwórczych poziomów antraknozy, które mogłyby wpłynąć na zbywalność. Jeżeli próg jest wysoki, istnieje duże ryzyko, że zbywalność znacznej części bulw zostanie ograniczona, o ile nie zostaną podjęte środki łagodzące (wykres 13). Jednak wzorce rozwoju antraknozy w wielu badaniach okazały się bardzo sprzeczne, a porażenie gleby lub materiału siewnego nie zawsze powoduje odpowiednie obniżenie plonu i jakości bulw. Faktem jest, że konsekwencje zakażenia antraknozą ostatecznie zawsze zależą od unikalnej kombinacji warunków zewnętrznych i cech agrotechnicznych w warunkach produkcyjnych.
Optymalna temperatura dla wzrostu strzępek C. coccodes wynosi 24°C оC. Tworzenie sklerocji, a następnie infekcja tkanki roślinnej zachodzi w szerokim zakresie temperatur. Nie zaobserwowano żadnych objawów na bulwach w wieku 15 lat оC, ale w tej temperaturze stwierdzono dużą liczbę porażonych pędów. Napowietrzanie i światło również wpływają na kiełkowanie sklerocji. Konidia tworzą się w większej liczbie na nadziemnych sklerocjach.
Antraknoza jest najczęściej kojarzona z lekkimi piaszczystymi glebami, wysokimi temperaturami i słabym odprowadzaniem wody. Jednak zróżnicowanie uszkodzeń roślin narażonych na stres utrudnia identyfikację trendów wpływu czynników abiotycznych i biotycznych na rozwój choroby. W Stanach Zjednoczonych nadmierne opady deszczu, nawadnianie i niskie temperatury na początku sezonu, po których nastąpiła przedłużająca się susza, doprowadziły do rozprzestrzenienia się choroby. W Anglii nawadnianie zmniejszało porażenie łodyg, korzeni i bulw do 18 tygodni po posadzeniu, ale zwiększało się w późniejszych etapach. W Izraelu, gdzie wszystkie uprawy są regularnie nawadniane, przy wysokich temperaturach i stosunkowo suchej glebie zaobserwowano choroby i straty plonów.
Wszystkie odmiany ziemniaków są podatne na C. coccodes, ale w różnym stopniu. Badania zagraniczne wykazały, że odmiany cienkoskórne są bardziej podatne na antraknozę niż odmiany gruboskórne. Pomiędzy odmianami występują znaczne różnice w częstości kolonizacji łodyg i nasileniu uszkodzeń powierzchni bulw. Różnice między porażeniem łodygi i bulw zaobserwowano w przypadku niektórych odmian, na przykład Desiree ma najniższy wskaźnik porażenia łodygi, ale jeden z najwyższych wskaźników porażenia bulw. Nasilenie infekcji jest większe we wczesnych odmianach, ponieważ bulwy są w kontakcie z inokulum glebowym przez dłuższy czas. Różnice występują zarówno we wczesnych, jak i późnych odmianach, co sugeruje wpływ genetyczny. W Federacji Rosyjskiej przeprowadzono odrębne badania odporności odmian ziemniaka na antraknozę. Na przykład monitoring VIZR materiału bulw elitarnych kategorii w regionie północno-zachodnim wykazał, że odmianami najmniej dotkniętymi antraknozą były Gala, Lomonosovsky, Eurasia, Labadiya i Sudarynya, a najbardziej podatne były Nevsky, Red Scarlett, Charodey i Aluet .
Częstotliwość występowania antraknozy na bulwach jest większa przy jedno-trzyletnim płodozmianie ziemniaka. Częstość występowania antraknozy znacznie spada wraz ze wzrostem liczby lat między uprawami ziemniaka. C. coccodes występuje na polach bez ziemniaków przez 10 i 15 lat, ale wskaźniki infekcji spadają po 6 lub więcej latach bez produkcji ziemniaków. Wiele gatunków roślin uprawnych i chwastów jest dotkniętych antraknozą, są roślinami żywicielskimi i przyczyniają się do długotrwałego utrzymywania się infekcji w glebie. Badania zagraniczne wykazały, że ma szeroką gamę żywicieli, która obejmuje co najmniej 58 gatunków i 17 rodzin, przede wszystkim warzywa z rodziny psiankowatych - pomidor, bakłażan, czerwona papryka, tytoń. Ale dotyczy to również marchwi, cebuli, brokułów, sałaty, buraków stołowych i cukrowych, rzepaku, żółtej gorczycy. Pszenica, kukurydza, soja, słonecznik, trawy zbożowe, fasola, groch nie są podatne na chorobę. Produkty rozpadu uwalniane przez niektóre gatunki roślin - krzyżowe, koniczyna słodka, łubin, mieszaniec sorgo-sudański ograniczają rozwój wielu rodzajów grzybów chorobotwórczych. Sideration upraw biofumigantów zmniejsza nasilenie antraknozy.
Wiele chwastów (psiankowata, powój polny, gaza biała, torebka pastewska, pokrzywa zwyczajna, rdestowiec, heliotrop europejski itp.) może prowadzić do zwiększenia ilości inokulum lub może służyć jako źródło inokulum pierwotnego dla ziemniaków. Inokulum C. coccodes przeżywa w glebie nie tylko na innych gatunkach żywicielskich, ale także na bulwach ziemniaka pozostawionych na polu po zbiorach. Kiełkują w następnym roku i kumulują wiele chorób. Bulwy ziemniaka chwastów zachowują żywotność przez kilka lat po początkowym zbiorze. Kontrola dobrowolna, tj. dobrowolny ziemniak ma kluczowe znaczenie dla zmniejszenia ilości pierwotnego inokulum antraknozy w glebie.
Stres roślin spowodowany niedoborami składników odżywczych lub brakiem równowagi może również zwiększyć kolonizację korzeni ziemniaka przez antraknozę. W kontrolowanych eksperymentach azot podawano w dawkach 5, 40, 160 i 640 ppm, aby stresować rośliny przed niedoborem i nadmiarem azotu. Ukorzenione rośliny inokulowano zawiesiną zarodników C. coccodes. Zasiedlenie systemu korzeniowego było największe przy najniższym poziomie azotu (5 ppm). Zasiedlanie korzeni zmniejszało się wraz ze wzrostem stężenia azotu do 160 ppm, co było optymalnym poziomem N, a następnie wzrastało wraz ze wzrostem stężenia azotu do 640 ppm. Podczas badania potasu największa kolonizacja korzeni wystąpiła przy najniższym poziomie potasu (0 mg K) i malała wraz ze wzrostem stężenia potasu do 80 mg (K optymalny), a następnie nieznacznie wzrastała wraz ze wzrostem stężenia potasu do 160 mg K. Ten sam wzór obserwowany podczas badania fosforu. Największe zasiedlenie korzeni wystąpiło przy najniższym poziomie fosforu (0,032 ml), a następnie zmniejszało się wraz ze wzrostem stężenia fosforu do optymalnego poziomu P (1,00 ml). Tak więc korzenie ziemniaka są silniej skolonizowane przez grzyba czarnej kropki, gdy rośliny są pod wpływem zarówno niedoboru, jak i nadmiaru azotu, potasu i fosforu, niż gdy rośliny mają dostęp do optymalnych poziomów każdego składnika odżywczego.
Nawadnianie ziemniaków po wyschnięciu wierzchołków co najmniej dwukrotnie zwiększa częstość i nasilenie antraknozowych uszkodzeń bulw. Nasilenie porażenia bulw i liczba bulw porażonych na końcu stolonu były istotnie większe w bulwach wyhodowanych z roślin z wodą górną w porównaniu z roślinami z wodą dolną. Woda przemieszczająca się w dół gleby odgrywa znaczącą rolę w przenoszeniu inokulum z zainfekowanych nasion bulw do bulw potomnych.
Badania wykazały również, że częstotliwość i nasilenie antraknozy wzrasta na niemytych bulwach przechowywanych w temperaturze 15 оC kontra 5 оC oraz że wczesne zbiory i przechowywanie bulw w stanie suchym mogą zapobiec wystąpieniu choroby lub ją ograniczyć. Rozwój czarnych plam na bulwach jest zminimalizowany przez natychmiastowe schłodzenie plonu w porównaniu z bulwami przechowywanymi w temperaturze 12°C przez 10 dni przed schłodzeniem. Jednak ważne jest, aby odpowiednio wysuszyć plon, aby uniknąć rozwoju gnicia. Przy długotrwałym przechowywaniu nie ma różnicy pomiędzy pojawieniem się choroby na bulwach przechowywanych w temperaturze 2,5°C lub 3,5°C.
Opcje zarządzania antraknozą ziemniaczaną polegają na stosowaniu środków zapobiegawczych i ochronie za pomocą fungicydów. Jedną z najważniejszych zasad zwalczania czarnej plamistości jest zmniejszenie ilości inokulum w glebie w wyniku zastosowania płodozmianu, usuwania resztek pożniwnych, chwastów i chwastów. Nawet najdłuższy płodozmian z uprawami niebędącymi żywicielami (np. zboża, soja czy kukurydza) nie leczy całkowicie gleby (mikrosklerocja antraknozy utrzymują się na polu nawet do 8-15 lat), ale kilkakrotnie obniża poziom inokulum .
Aby zapobiec i zmniejszyć częstość występowania tej choroby, należy podjąć następujące środki:
1. Selekcja odmian o wysokiej odporności na antraknozę, unikanie uprawy odmian wrażliwych na porażonych polach;
2. Używaj certyfikowanych nasion renomowanych producentów i przed zakupem przetestuj je w polu lub sklepie. Unikaj zainfekowanych nasion bardziej wrażliwych odmian. Przepisy dotyczące kwalifikacji sadzeniaków we wszystkich krajach obecnie nie przewidują regulacji antraknozy, ponieważ nie ma bezpośredniego związku między porażką bulwy macicy a rozwojem infekcji bulw potomnych. Badania PCR próbek z objawami antraknozy na liściach przeprowadzone w Federacji Rosyjskiej wykazały, że spośród 96 próbek tylko 5 było dotkniętych antraknozą. Jednocześnie w USA i Wielkiej Brytanii częstość występowania C. coccodes w kwalifikowanych bulwach nasiennych waha się odpowiednio od 0 do 90% i 0-75%. Zainfekowane importowane nasiona są głównym kanałem rozprzestrzeniania się antraknozy na regiony uprawy ziemniaków w Federacji Rosyjskiej;
3. Przetestuj nasiona pod kątem C. coccodes, aby określić, czy konieczne jest zastosowanie środka grzybobójczego. Nie sadzić zainfekowanych nasion na czystych polach wolnych od antraknozy;
4. Unikaj sadzenia ziemniaków na słabo przepuszczalnej glebie;
5. Prowadzenie podstawowej uprawy odkładnicowej zapewnia głębokie wmieszanie resztek roślinnych i ich rozkład;
6. Zrównoważone i wystarczające nawożenie;
7. Unikaj nadmiernego podlewania, zwłaszcza odmian wrażliwych i późno dojrzewających. Zmniejszenie ilości wody między suszeniem a zbiorem
8. Zbiór bulw jak najszybciej po wysuszeniu łęcin;
9. Szybkie schładzanie ziemniaków w przechowalni. Precyzyjna kontrola temperatury i wilgotności podczas przechowywania. Wysokie temperatury i kondensacja na powierzchni bulwy przyczyniają się do choroby;
10. Biofumigacja gleby nawozem zielonym z gorczycy białej, rzodkiewki oleistej, koniczyny słodkiej, mieszańca sorgo-Sudanka.
W przypadku stwierdzenia na bulwach iw glebie porażenia antraknozą należy zastosować specjalistyczne fungicydy.
Ochrona chemiczna przed antraknozą. Przez długi czas fungicydy z azoksysrobiną były jedynym sposobem zwalczania infekcji gleby. W licznych testach, azoksystrobina zastosowana w bruździe podczas sadzenia lub wbudowywania, wykazuje stałą redukcję antraknozy. Zabieg ten opóźnia rozwój choroby o kilka tygodni. Ponieważ azoksystrobina należy do strobirulin (klasa FRAC 11) zdolnych do indukowania oporności, tj. w nim odporności patogenów, to temat ten jest aktywnie dyskutowany, zwłaszcza przez konkurencyjnych producentów środków ochrony roślin.
Obecnie lista aktywnych cząsteczek stosowanych przeciwko antraknozie została znacznie rozszerzona, ponieważ okazało się, że infekcja ziemniaków występuje przez cały sezon wegetacyjny. Azoksystrobina pozostaje wzorcem skuteczności przeciwko antraknozie, ale nie powinna być stosowana częściej niż raz w sezonie. Najszerszą listę fungicydów przeciwko antraknozie zarejestrowano w USA (tab. 14). Kilka preparatów zaleca się wprowadzać w bruzdę podczas sadzenia, pozostałe w okresie wegetacji ziemniaków.
Tabela 14. Wykaz fungicydów do zwalczania antraknozy ziemniaczanej, USA, 2021
Czarna kropka | azoksystrobina | 6.0 – 15.5 uncji Aframe, Equation, Quadris Flowable, Satori, Willowood Azoxy 2SC | 14 |
Nie przekraczać jednego zastosowania środka grzybobójczego z grupy 11 przed naprzemiennym stosowaniem środka grzybobójczego o innym mechanizmie działania Quadris i Headline jest Fungicydy z grupy 11.
Quadris Opti to grupa 11 i fungicyd grupy M. |
|
azoksystrobina + chlorotalonil | 1.6pt Quadris Opti | 14 | |||
azoksystrobina + difenokonazol | 8.0 – 14.0 uncji Quadris Top | 14 | |||
piraklostrobina | 6.0 – 9.0 uncji Nagłówek SC, EC | 3 | |||
azoksystrobina + benzowindiflupyr | 0.34 – 0.5 uncji Elatus/1,000 stóp rzędu | 14 | Stosować w bruździe podczas sadzenia w wąskim pasie nad kawałkiem nasion. Nie przekraczać 9.5 uncji/rok przy aplikacji z pasami. | ||
chlorotalonil | 1.0 – 1.5 pkt Bravo Weather Stik Echo 720 1.5 – 2.25 pkt Bravo Zn, Equus 500 Zn 0.875 – 1.25 funta Echo 90DF, Echo Zn 0.9 – 1.36 funta Bravo Ultrex 82.5WDG, Equus DF |
7 7 7 7
|
Zwróć uwagę na sezonowe ograniczenia użytkowania na etykiecie. Obecne oznakowanie dotyczące rocznego stosowania produktów z chlorotalonilem w stanie Wisconsin dopuszcza 11.2 funta ai/a produktów Bravo (Ultrex, WeatherStik, Zn) (specjalna rejestracja W! wygasa 12/31/17, jednak odnawianie jest w toku — sprawdź specjalne wykazy rejestracji DATCP ) i 16.0 funtów ai / a produkty Echo (Zn, 720, 90DF) (specjalna rejestracja WI wygasa 12/31/20). | ||
chlorotalonil + cymoksanil | 2.0 pkt Ariston | 14 | Stosować w odstępach od 7 do 14 dni. Krótszy odstęp należy stosować, gdy rośliny szybko rosną, a stan chorobowy jest ciężki. | ||
cymoksanil + famoksadon | 6.0 – 8.0 uncji Tanos | 14 | Zarządza kilkoma innymi chorobami. Postępuj zgodnie z wytycznymi dotyczącymi zarządzania odpornością. Do stłumienia. | ||
difenokonazol | 5.5 – 7.0 uncji Top MP | 14 | Postępuj zgodnie z wytycznymi dotyczącymi zarządzania odpornością. | ||
Czarna kropka (cd.) | fenamidon | 5.5 – 8.2 uncji Powód | 14 | Zarządza kilkoma innymi chorobami. Postępuj zgodnie z wytycznymi dotyczącymi zarządzania odpornością. Do stłumienia. | |
fluopyram + pirymetanil | 11.2 uncji Luna Tranquillity (tłumienie) | 7 | Aplikację fungicydów należy rozpocząć zapobiegawczo. Nie stosować więcej niż 43.6 uncji/rok na sezon. Nie wykonuj więcej niż 2 kolejnych aplikacji fungicydu z grupy 7 lub 9 przed rotacją z fungicydem z innej grupy. | ||
fluoksastrobina | 0.16 – 0.24 uncji/1,000 stóp w rzędzie Wstrząs wtórny, Evito 480 SC 6.1 – 9.2 uncji/rok Tepera | 7 | Postępuj zgodnie z wytycznymi dotyczącymi zarządzania odpornością. | ||
flutolanil | 0.71 – 1.1 funta Moncut 70-DF | zabieg przy sadzeniu | Bezpośrednio opryskiwać równomiernie wokół lub nad kawałkiem nasion w pasie od 4 do 8 cali przed przykryciem glebą. | ||
fluksapyroksad + piraklostrobina | 4.0 – 8.0 uncji Priaxor | 7 | Nie wykonuj więcej niż 3 aplikacji na sezon. Zastosuj nie więcej niż 24.0 fl oz / rok na sezon. | ||
mankozeb | 0.4 – 1.6 qt Dithane F45 4F 0.5 – 2.0 funta Dithane M45, Penncozeb 80WP, Penncozeb 75DF 1.0 – 2.0 funta Dithane 75DF Rainshield NT, Koverall, Manzate 200 75DF |
3
3
3 |
Nie przekraczaj łącznie 11.2 lb ai/a EBDC na sezon wegetacyjny. Materiały EBDC obejmują maneb, mankozeb i metiram. | ||
mefentriflukonazol | 3.0 – 5.0 uncji Provysol | 7 | Nie stosować więcej niż 5.0 uncji (0.13 funta) / na akr na aplikację. Nie męskości więcej niż aplikacje przy 5.0 uncjach lub | ||
Czarna kropka (cd.) | 5 zastosowań przy 3.0 uncjach na akr rocznie. | ||||
metakonazol | 2.5 – 4.0 uncji Quash | 1 | Nie wykonywać więcej niż 4 aplikacji na sezon. Nie stosuj więcej niż 2 kolejne aplikacje. Nie stosować więcej niż 16.0 oz/rok na sezon. | ||
pentiopirad | 10.0 – 24.0 uncji Vertisan | 7 | Nie przekraczaj 72.0 uncji rocznie. Wykonaj nie więcej niż 2 kolejne aplikacje Vertisan przed przejściem na środek grzybobójczy o innym sposobie działania. | ||
pydiflumetofen + fludioksonil | 9.2 – 11.4 uncji Miravis Prime | 14 | Tłumienie tylko czarnej kropki. Nie aplikować drogą powietrzną więcej niż 2 razy w roku. Nie stosować więcej niż 34.2 uncji na akr rocznie. | ||
piraklostrobina + metiram | 2.0 – 2.9 funta Cabrio Plus | 3 | Nie stosować więcej niż 2 kolejne aplikacje przed zmianą fungicydu innego niż Grupa 11 lub M3. | ||
zoksamid + chlorotalonil | 32.0 – 34.0 uncji Zing | 7 | Nie wykonuj więcej niż 2 kolejnych aplikacji przed przejściem na inny tryb działania. |
Od 2023 roku w Stanach Zjednoczonych dozwolone są również składniki aktywne pentachloronylotrobenzyna, mandipropamid + difekonazol, azoksystrobina + mankozeb, mefentriflukonazol + piraklostrobina. Większość wymienionych leków i kombinacji aktywnych cząsteczek może być stosowana w Federacji Rosyjskiej przeciwko zarazie i Alternarii.
Nie osiąga się radykalnego zniszczenia antraknozy za pomocą ochrony grzybobójczej. Wynika to z wydłużonego cyklu rozwoju choroby i infekcji z różnych źródeł: przez nasiona, glebę i kropelki unoszące się w powietrzu. Spadek stopnia rozwoju choroby jest jednak znaczny – dwukrotny (tab. 15). Plon ziemniaków na podłożu wysokorolniczym w najlepszych wariantach ochrony (obróbka liści oprócz stosowania doglebowego) wzrasta o 11-14 t/ha.
Tabela 15. Wpływ doglebowego i dolistnego stosowania fungicydów na rozwój antraknozy odmiany Russet Burbank, 2012
Leczenie JEŚLI=bruzda F=listne @20cm | Produkt / ha | Wizualna % czarna kropka- dolna 10cm łodygi | C. coccodes ng DNA/g łodygi ziemniaka | Plon MT/ha |
Quadris JEŻELI | 639 ml | 48.2 rok | 1798.4 rok | 58.68 rok |
Quadris IF Mancozeb F | 639ml 2.2kg | 41.0 b | 900.7 cd | 62.52 |
Quadris IF Priaxor F | 639 ml 426 ml | 31.7 c | 622.1 d | 54.36 bc |
Priaxor IF | 480 ml | 50.0 | 1542.6 rok | 54.72 bc |
Priaxor IF Bravo ZN F | 480 ml 1135 ml | 35.8 bc | 892.6 cd | 54.60 bc |
Priaxor IF Quadris F | 480 ml 639 ml | 25.6 cd | 1332.0 rok | 60.00 rok |
Priaxor IF Nagłówek F | 480 ml 426 ml | 28.3 cd | 789.0 cd | 65.76 |
Quadris IF Fontelis F | 639ml 1.1kg | 22.7 d | 595.1 d | 56.04 bc |
Vertisan IF Quadris F | 1646ml 639 | 35.5 | 2249 | 57.36 bc |
Nieleczona | 51.5 | 2072.9 | 51.96 c |
Z uzyskanych danych (patrz tabela 15) jednoznacznie wynika, że jedna aplikacja doglebowa przy sadzeniu fungicydów strobirulinowych nie wystarcza do opanowania tej choroby. W Kanadzie ta opcja jest nawet uważana za nierozsądną; fungicydy antraknozowe na bazie azoksystrobiny, difekonazolu, mefentrflukonazolu, benzovindiflupyru i fluopyramu + pirymetanilu zaleca się tam stosować tylko w sezonie wegetacyjnym. W rzeczywistości skuteczność przeciwko antraknozie musi być brana pod uwagę przy tworzeniu systemu ochrony ziemniaków przed poważnymi chorobami (alternaria, zaraza) w okresie wegetacji.Stwierdzono również, że wprowadzenie azoksystrobiny pod sam koniec sezonu wegetacyjnego , tydzień po wysuszeniu, daje dodatkowy znaczący efekt zmniejszenia uszkodzeń bulw.
Ochrona materiału sadzeniowego przed antraknozą jest obecnie uznawana za nieskuteczną, chociaż wiele substancji czynnych (difekonazol, piraklostrobina, imidazol) prawie całkowicie niszczy inokulum na powierzchni bulw (wykres 16). Jest to jednak efekt krótkotrwały, jego skutki niwelują się dość szybko, w ciągu miesiąca, ponieważ infekcja jest również wewnątrz bulw.
Wreszcie. Szkodliwość antraknozy znacznie wzrosła w ostatnim czasie, patogen ten przeszedł do kategorii problemów o znaczeniu ekonomicznym. Grzyb Colletotrichum coccodes, który powoduje antraknozę na ziemniakach, jest trudnym do przewidzenia i nieuchwytnym patogenem. Początkowa infekcja jest utajona. Infekcja korzeni, rozłogów, podziemnych i nadziemnych łodyg rozpoczyna się stosunkowo wcześnie w sezonie wegetacyjnym, ale jawne objawy patogenu (mikrosklerotia) mogą pojawić się na roślinach dopiero w okresie zbiorów. Bulwy zarażają się na polu, ale mogą nie wykazywać wyraźnych objawów aż do połowy okresu przechowywania. Choroba nie rozprzestrzenia się z bulwy na bulwę podczas długotrwałego przechowywania, ale podczas przechowywania zaczynają pojawiać się utajone infekcje i zwiększa się uszkodzenie bulw. Objawy antraknozy są często niejasne, jednoznaczne i pokrywają się z więdnięciem przez Alternaria, verticillium, naturalnym starzeniem, niedoborem azotu itp. W rezultacie identyfikacja choroby i ocena jej skutków w procesie wegetacji jest utrudniona. Wpływu choroby na plonowanie ziemniaków nie da się przewidzieć, ponieważ na szkodliwość patogenu wpływa bardzo wiele warunków i czynników, zarówno biotycznych, jak i abiotycznych.
Antraknoza jest trudna do kontrolowania. Inokulum przeżywa w glebie przez wiele lat, rozprzestrzenia się wraz z materiałem sadzeniowym i deszczem, a infekcja trwa przez cały sezon wegetacyjny. Najdłuższy płodozmian nie oczyszcza gleby, a przeplatanie ziemniaków z uprawami takimi jak marchew, buraki, cebula, gorczyca żółta i rzepak (na nasiona) prowadzi do kumulacji infekcji. Minimalizacja szkód powodowanych przez antraknozę jest możliwa w oparciu o pełne wykorzystanie środków organizacyjnych i technologicznych oraz kwalifikowane, antyuodporne stosowanie azoksystrobiny i szeregu innych substancji czynnych fungicydów. Szczególną uwagę należy zwrócić na stopień porażenia materiału siewnego i gleby. Ważne jest pełne i zbilansowane nawożenie i podlewanie ziemniaków, terminowy zbiór i właściwe przechowywanie produktów, skuteczne zwalczanie chwastów, w tym chwastów oraz wykorzystanie odymiającego działania nawozów zielonych. Skuteczne fungicydy należy stosować naprzemiennie i stosować podczas sadzenia w glebie, w pierwszej połowie sezonu wegetacyjnego i przed zbiorami. Chemiczna metoda zwalczania antraknozy powinna być obowiązkowym elementem nowoczesnego systemu ochrony ziemniaków.
Autor materiału: Sergey Banadysev, doktor nauk rolniczych. Nauki ścisłe, „Technologie Doka-Gene”